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血細胞分析范文1
【摘要】 目的：通過全血標本的檢測，對SYSMEXKX-21N、ABBOTT CD-3200、BEKMAN-COULTER AC.T 5diff三種血細胞分析儀的主要性能進行比較。方法：以衛生部提供的臨檢室血細胞質量評比液和隨機住院病人抗凝全血標本，按說明操作SYSMEXKX-21N、ABBOTT CD-3200、BEKMAN-COULTER AC.T 5diff血細胞分析儀進行標本檢測，測定白細胞(WBC)、紅細胞(RBC)、血紅蛋白(HBG)、血小板(PLT)總變異系數、準確性。結果：三種儀器的WBC、RBC、HBG的總變異系數相近，而雅培CD-3200血小板(PLT)的總變異系數(4.85 %)較大;隨機住院病人檢測結果經統計學分析表明，差異無統計學意義。結論：SYSMEXKX-21N、雅培CD-3200、BEKMAN-COULTER AC.T 5diff血細胞分析儀均可運用于臨床檢測中，但在臨床工作中應注意雅培CD-3200血小板計數。
【關鍵詞】 血細胞分析儀;使用評價;總變異系數
Abstract Objective： To evaluate the primary function of 3 kinds of hematology analyzers( SYSMEXKX-21N，ABBOTT CD-3200 and BEKMAN-COULTER AC.T 5diff) by examining anticoagulation blood samples from randomized patients. Methods: 3 kinds of hematology analyzers were employed to measure total variation coefficient and the precision of WBC，RBC，HBG and PLT with quality appraisal specimens from Clinical laboratory of the Ministry of Health and anticoagulation blood samples from randomized inpatients . Results: There was no remarkable difference in total variation coefficient of WBC， RBC and HBG from three kinds of Hematology Analyzers. But total variation coefficient of PLT(4.85 %) from CD-3200 is higher than those from others. Conclusion: SYSMEXKX-21N，ABBOTT CD-3200 and BEKMAN-COULTER AC.T 5diff， three kinds of hematology analyzers， can be applied to clinical laboratory determination， with much attention paid to the platelet count of Abbott CD-3200 Hematology Analyzer in clinical practice.
Key words Hematology analyzer; Evaluation; Total coefficient of variation
血常規是臨床工作中常用的一種檢測手段，為臨床診斷和治療提供有價值的參考數據，越來越受到醫療工作者的重視。使用血細胞分析儀進行血常規分析是目前臨床最常用的手段，具有操作簡便、檢測速度快、精確度高的優勢。其檢測值直接指導著臨床工作，是病人進行治療的重要參考指標[1];對疾病的診斷與治療有著重要的意義。而血細胞分析儀的質量直接關系到血細胞數值的準確，為此對我科采用的三種血細胞分析儀進行了比較分析，以期為今后的血細胞分析、檢測、血細胞分析儀的選擇提供一定的參考。
1 材料與方法
1.1 材料 采用120例我院隨機住院病人抗凝全血的標本和衛生部提供的臨檢室血細胞質量評比液，批號：2008221、2008222、2008223、2008224、2008225。每日對評比液測定1次，連續1月，然后對各臺儀器測定結果進行統計學分析。
1.2 儀器類型 SYSMEXKX-21N(日本SYSMEX公司生產)、雅培CD-3200(美國ABBOTT公司生產)、BEKMAN-COULTER AC.T 5diff(美國BEKMAN-COULTER公司生產)。
1.3 試劑 均為廠家生產的配套試劑。
1.4 操作方法 嚴格按照按說明書操作程序進行，測定前用質控校正儀器。
1.5 統計學方法 采用SPSS13.0軟件隨機資料方差分析法，P
2 結果
2.1 總變異系數測定 采用衛生部提供的臨檢室血細胞質量評比液，批號同上。按下列公式求出其總變異系數(TCV)[2)。設標本數為u，各標本測定次數為n，標本間的離均差平方和為SSQ，則：TCV=SSQ/u(n-1)X×100 %。
血細胞分析儀SYSMEXKX-21N、雅培CD-3200、BEKMAN-COULTER AC.T 5diff的總變異系數結果表明：白細胞(WBC)總變異系數在三種儀器分別為1.34 %、1.16 %、1.33 %;紅細胞(RBC)總變異系數分別為0.57 %、0.57 %、0.77 %;血紅蛋白(HBG)總變異系數分別為0.59 %、0.46 %、0.60 %;血小板(PLT)的總變異系數分別為1.29 %、4.85 %、1.65 %。
2.2 標本測定 120例我院隨機住院病人抗凝全血標本，分別于三種血細胞分析儀進行標本檢測，并運用SPSS13.0版隨機資料方差分析(ANOVA)，對檢測結果進行統計學分析，所有實驗數據用均值±標準差(x±s)表示。三種分析儀檢測結果差異無統計學意義(P>0.05)，詳見表1。表1 WBC、PLT、RBC、HBG三種儀器檢測結果(26.54.31±1.17131.2±29.1CD-32001206.33±3.76207.8±122.64.07±1.08133.3±30.3AC.T 5diff1206.65±4.02202.1±131.14.33±1.18128.7±29.6F值0.06120.02170.04090.0320
注：各組均P>0.05
3 討論
SYSMEXKX-21N血細胞分析儀是三分群電阻式血細胞原理，根據細胞體積分布直方圖進行分析和計算。ABBOTT CD-3200是細胞五項分類多角度偏振光散射法(MAPSS)原理，根據標本在水動力聚焦系統的作用下進入檢測部，在激光束的照射下，細胞在多個角度都產生散射光，根據計算將結果分類得到。AC.T 5diff血細胞分析儀運用細胞化學光吸收和體積分布技術(Absorbance cytochemistry and Volume，AcV)進行細胞五項分類[2]。
隨著醫療市場的變革，臨床和患者對檢驗科提出了更高的要求，需要更多的診斷指標，更快的檢測速度，更低的檢測費用，最重要的是更準確的數據，在臨床工作中運用更快速、更準確、重復性好且成本合理的血細胞分析儀是大勢所趨，滿足臨床不同標本檢測要求，而每臺儀器的質量高低，所檢測標本的準確性對臨床工作影響甚大。為此我們對SYSMEXKX-21N、ABBOTT CD-3200、BEKMAN-COULTER AC.T 5diff三種血細胞分析儀測試結果進行分析。
為了保證檢測結果的準確性、權威性，我們采用衛生部提供的臨檢室血細胞質量評比液，計算WBC、RBC、HBG、PLT的總變異系數(TCV)，結果WBC、RBC、HGB總變異系數相差不大;PLT的總變異系數分別為1.29 %、4.85 %、1.65 %。顯示雅培CD-3200血細胞分析儀在血小板(PLT)的測試中，其總變異系數(4.85 %)較大，與已報道文獻(4.92 %)[3]相近，在我們臨床工作和血細胞分析儀的選擇中值得注意。因SYSMEXKX-21N、雅培CD-3200、BEKMAN-COULTER AC.T 5diff相關性、線性、交叉污染率、重復性等已有報道[4-6]，故在此不進行分析。
120例我院隨機住院病人抗凝全血標本，其檢測結果值有高有低，數據具有一定的代表性，可以反映基本的臨床情況;WBC、RBC、HBG、PLT隨機資料方差分析，三種分析儀檢測結果差異無統計學意義。表明SYSMEXKX-21N、ABBOTT CD-3200、BEKMAN-COULTER AC.T 5diff血細胞分析儀均可運用于臨床檢測中，可為臨床服務。
參考文獻
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[4] 孔英蘭.CD-3200型血細胞分析儀性能的初步評價[J].檢驗醫學與臨床，2006，30(8):141-143.
血細胞分析范文2
1 血細胞分析儀的應用現狀
血細胞分析最早僅是紅細胞、白細胞的顯微鏡人工計數，由于其誤差大、重復性差，影響因素多、效率低，自20世紀50年代逐漸由血細胞分析儀取而代之，80 年代以前血細胞分析儀主要是半自動型，標本在機外預稀釋后才上機檢測，干擾和隨機誤差較大。近年來，全自動血細胞分析儀不斷涌現，在機內稀釋加溶血劑，檢測和換算報告，輔助功能越來越完善，提高了儀器的精密度和準確度。現在已有聯合型血液分析系統問世，將先進的血細胞分析儀、涂片機、染片機、網織紅細胞計數儀串聯在一起，大大避免了實驗的隨機誤差，提高了工作效率。
2 血細胞分析的項目進展
傳統的血細胞分析僅包括紅細胞(RBC)計數，血紅蛋白(Hb)測定，白細胞(WBC)計數及分類，血小板(PLT)計數。隨著血液分析儀性能的提高，逐漸增加了血細胞比容(HCT)，紅細胞平均體積(MCV)，紅細胞平均Hb含量(MCH)，紅細胞平均Hb濃度(MCHC)，紅細胞體積分布寬度(RDW)，血小板壓積(PCT)，血小板平均體積(MPV)，血小板體積分布寬度(PDW)。WBC分類由人工顯微鏡分類到分析儀自動分類，根據儀器的檔次又分為三分類和五分類，儀器采用電阻抗原理可把WBC分成中性粒細胞，中間細胞和淋巴細胞三類，而高檔儀器采用電阻抗、激光、射頻、光散射、細胞化學等技術，把WBC精確到了五分類，即:中性粒細胞、淋巴細胞、單核細胞、嗜堿細胞、嗜酸細胞。
3 分析結果的臨床應用
3.1 紅細胞系列 RBC 計數，Hb 測定，HCT 主要用來判斷有無貧血及貧血的程度，三者增高主要見于各種原因引起的骨髓代償性增生或者血液濃縮，如新生兒、高原居民、肺心病、大面積燒傷、嚴重嘔吐及腹瀉等，會引起全血粘度增高，使機體處于血栓前狀態，而臨床更為常見的是三者降低即貧血，根據Hb的降低程度劃分貧血程度，根據RBC、Hb、HCT可計算出RBC參數MCV、MCH、MCHC，進而把貧血分成大細胞性、正常細胞、小細胞三類。近年來，認為RDW 對貧血的病因診斷和鑒別診斷具有更大的意義，RDW與MCV結合應用，對貧血的診斷作用更大。如: 同是MCV減小， 缺鐵性貧血RDW升高而大多數輕型珠蛋白生成障礙性貧血RDW 正常。有部分再生障礙性貧血呈大細胞性，但其RDW正常，可與巨幼紅細胞性貧血RDW升高相鑒別。另有報道認為，MCV 越小，其診斷珠蛋白生成障礙性貧血的敏感性和特異性越高。
3.2 白細胞系列 WBC計數主要用于: ①判斷感染的類型及程度，如增高常見于化膿性細菌引起的感染，升高的程度取決于感染的范圍、嚴重程度以及機體的反應能力，往往與感染的程度呈正相關，中度以上的感染往往伴隨著核象的左移和中性粒細胞的中毒性改變。②嚴重的組織損傷時升高，升高程度與組織損傷程度及預后相關。有報道認為，腦梗死及心肌梗死患者早期WBC 計數越高，病死率也越高。③中毒患者WBC 計數升高且升高程度與中毒程度呈正相關，WBC 越高，有機磷中毒愈嚴重，恢復愈慢。④對放、化療進行監測，評價患者對射線的耐受能力。
3.3 PLT系列 PLT計數主要用來評價血液的凝固功能，如增高，可增加血液的粘滯性，使血液處于血栓前狀態，常見于慢性粒細胞白血病、溶血性貧血、脾切除后及急性出血等。而PLT 計數降低則表示有出血傾向，常見于造血功能障礙，如白血病、再生障礙性貧血;血小板破壞過多，如血小板減少性紫癜、脾功能亢進、彌散性血管內凝血等。近年來，臨床愈加重視MPV、PDW對疾病的診療意義。MPV首先可用于①鑒別血小板減少的原因。由于PLT破壞增多引起的PLT 減少時MPV增大，如血小板減少性紫癜。由于骨髓受損導致血小板減少時MPV下降，如再生障礙性貧血，而由于PLT周圍血分布異常所致PLT減少時MPV正常，如反應性血小板增多癥。②作為骨髓功能恢復的早期診斷指標，骨髓抑制時MPV 降低，當骨髓功能恢復時，MPV 增大并先于血小板數量升高。在白血病患者化療期間，骨髓抑制期MPV 明顯降低，骨髓恢復早期MPV明顯升高，所以MPV可作為白血病化療期間骨髓造血功能恢復的早期指標。③血栓前狀態或血栓性疾病時MPV升高，如腦梗死急性期MPV明顯升高，并可作為預后的一個指標。④作為出血程度的監護指標，MPV越小，出血傾向越嚴重，即便血小板重度下降，如MPV 升高，出血發生率亦低。
4 分析后質量控制
4.1 標本室溫保存以備復查標本檢查完畢，應密封室溫保存至少一天，防止水分蒸發及飛蟲吸食。標本不宜放置冰箱，因血小板不宜在低溫下貯存。
4.2 妥善保存實驗記錄儀器的校準記錄、質控數據、患者檢驗結果的原始數據、復核數據都應保存2年以上。
4.3 加強與臨床科室聯系:若結果超出生理變化范圍與臨床診斷不符，在排除標本、試劑、儀器等異常后，要及時與臨床醫師取得聯系，并觀察血片。有作者報道，輸注脂肪乳后，會使阻抗原理計數血小板假性增高，建議輸入脂肪乳(5～6) 小時后檢測血小板為佳。
4.4 積極參加室間質量控制:通過參加室間質評可以將自己的血細胞分析儀的準確度與精密度和同類儀器進行比較，及時發現問題，有利于保證血細胞檢測的質量。
血細胞分析范文3
關鍵詞 血液病 血細胞分析儀
doi:10.3969/j.issn.1007-614x.2010.15.152
資料與方法
2006～2009年血細胞分析儀計數1700例血細胞及分類,Hb、Pt及直方圖異常的標本作形態學復查發現血液系統疾病107例。其中急性非淋巴細胞白血病(NALL)11例,急性淋巴細胞白血病(ALL)4例,慢性粒細胞白血病(CML)3例,慢性淋巴細胞白血病(CAL)1例,血小板減少性紫癜(ITP)3例,骨髓增生異常綜合征(MDS)6例,巨幼細胞性貧血2例,多發性骨髓瘤(MM)1例,傳染性單核細胞增多癥39例,惡性淋巴瘤1例。所有病人均為初診患者,確認病例均經本院骨髓細胞形態學或上級醫院確診。其中男69例,女38例。年齡11個月～87歲。
儀器與試劑:BC-1800血細胞分析儀及配套試劑,全血質控物。配套試劑。
方法:全自動三分類血細胞計數,常規采集末梢血,同時做血涂片。對WBC、Hb、pt及白細胞直方圖異常者做瑞氏染色分類200血細胞,并同時觀察WBC、RBC及Pt的形態及分布情況。
結 果
檢查出107例血液系統疾病。
手工復查結果:篩查出107例血液系統疾病。其中急非淋11例,急淋4例,慢粒3例,慢淋1例,傳染性單核細胞增多癥39例,嗜酸性粒細胞增多癥1例,增生性貧血36例,血小板減少性紫癜3例,MDS6例,巨幼貧2例,多發性骨髓瘤1例。血液系統惡性疾病所占比例并不很高,而增生性貧血、傳染性單核細胞增多癥比例較高,在工作中一定要注意異型淋巴細胞與原幼稚細胞的區別。
白細胞直方圖分布,見圖1。
討 論
全自動血細胞分析儀快速、方便、精確度高,是人工無法替代的阻抗法三分群。血液分析原理是溶血素破壞RBC后,根據白細胞體積大小通過計數通道時所產生的脈沖大小來對WBC進行分類計數。顯微鏡下計數WBC是在油鏡下通過觀察細胞大小、形態、染色質的結構特點,胞漿的著色特點,有無核仁等對白細胞進行分類。不同的儀器直方圖是不同的,但只要是白細胞直方圖出現R1、R2、R3報警,都要進行形態學復檢。異常白細胞直方圖只是讓檢驗者粗略判別各類白細胞比例或有無明顯異常細胞,進而進行形態學復查時注意這些變化的真正意義,而不能僅憑白細胞直方圖的變化來進行診斷[1]。血液分析儀只對典型的血液病做出提示性診斷,以便作進一步檢查。如果使用不配套的試劑導致直方圖不典型或對報警掌握不夠,就會忽視血涂片造成漏檢甚至誤檢。本組107例血液系統疾病是從1700例標本中篩查出來后通過手工復查,骨髓細胞形態學或其他組化染色而確診。其中血液系統惡性疾病反占1.5%,傳染性單核細胞增多癥占35.5%,增生性貧血占33.6%。血液系統惡性疾病雖然是少數,但不排除沒有。這就要求大家在工作中對于出現的異常報警及各指標的計數異常時要手工涂片復檢以免漏檢和誤診。雖然血液病特別是白血病的診斷主要依據MICM(形態學、免疫學、細胞遺傳學、分子生物學。但在基層醫院的工作中,血液分析篩查加手工形態學復查結合臨床病史體征是診斷血液病的主要依據。
血細胞分析范文4
關鍵詞：檢驗科 血細胞分析儀 管理對策
在現代化的醫院中，醫療儀器設備不僅是開展醫療、教學、科研的必備條件，而且是提高醫療質量的物質基礎和先決條件，隨著醫學科學的飛速發展，現代化的檢測技術大量運用于醫學檢驗工作中，血細胞分析儀最近幾年來已被廣泛運用于醫學檢驗技術中。檢驗科全面質量管理體系的建立是保證工作質量，提高檢測水平的關鍵，是檢驗科全面管理的需要，是實際工作的需要。血細胞分析儀在使用過程中，我們堅持樹立全面質量管理的觀念，認真做好質量控制和儀器的維護與保養工作，使用效果非常滿意。由于長時間的使用和管理血細胞分析儀，我們積累了較為豐富的經驗，為此，下面談一點我們粗淺的見解。
1 樹立全面質量管理的觀念
縱觀醫學檢驗事業的發展，核心問題就是質量管理的問題，質量管理是醫學檢驗之本，沒有檢驗結果的高質量就談不上學術的高水平，沒有準確可靠的檢驗結果作為依據，臨床診斷治療工作就受到很大的制約，而且檢驗質量又是檢驗科的核心問題，質量得不到保證，再先進的儀器和方法也得不到可信任的結果[1]。圍繞檢驗質量這一核心工作，首先，我們應該樹立全面質量管理的觀念，所謂全面質量管理是指在實驗的過程中所有影響實驗結果的因素和環節都要處于受控的狀態，保證每一個環節的協調統一，確保實驗結果真實可靠[2]，我們把這一過程劃分為檢驗前的質量管理工作、檢驗過程中的質量管理工作和檢驗后的質量管理工作。
2 檢驗前的質量管理工作
檢驗前階段是檢驗過程的第一階段，也是整個檢驗過程中很重要但又容易被忽略的環節，包括從臨床醫師開出的檢驗申請單開始，檢驗單的填寫，患者準備，標本采集，標本儲存，運送直至接收等幾個具體環節，而這些環節都是由醫生和護士等在實驗室外部完成的，我們需要與其加強溝通，協作并監督他們完成這一過程的工作，針對每個環節的質量保證，要求的具體做法如下。
2.1 檢驗申請的內容要求
清晰準確，并有準確的臨床信息，包括患者姓名、性別、年齡、住院號、門診號、有條件的話我們建議使用ID號，申請人姓名、明確的檢驗項目，標本采集時間、采集的部位等內容，并要求檢驗工作人員審查確保其完整。
2.2 患者的準備
患者的準備很重要，由于患者自身的差異以及在診療過程中的動態影響，必須要求其規范標本采集前的一切行為，我們的要求是：患者在標本采集前應處于情緒穩定的平靜狀態，避免劇烈的運動以及緊張、恐懼心理，并主張在清晨固定的時間采集，最好空腹采血，匆忙起床等情況下應囑其先休息后再采集，采血前應該禁煙、禁酒等，最好禁食。
2.3 正確采集標本
首先確保采集管的干燥清潔，并有EDTA-K2抗凝劑，1ml血液要求10～15μl抗凝劑，建議統一采用坐姿采血，并保證采血過程合乎規范，標本采集結束后輕輕混勻，有相關文獻報道，在大量靜脈滴注的患者存在血液稀釋使某些項目結果較真實值偏低[3]，應避免在輸血輸液部位采集，盡可能在輸血輸液等操作之前或有效休息后采集，盡可能排除可能造成標本溶血的操作，熟練掌握穿刺術，確保操作合乎規范，例如穿刺次數、時間等因素，采集完成后要在標本管上標記采樣時間及患者信息。
2.4 標本的儲存、運送及接收
標本采集后應該存放于專用密閉容器內，由專人立即送至檢驗科，接收標本時要嚴格觀察標本是否符合要求，包括標本類型與申請類型統一，標本外觀完好情況，病人信息完整情況等。
3 加強檢驗科與臨床科室交流
檢驗工作和臨床是密切相關的，許多工作是需要雙方有效合作，通過有效合作可以對檢驗前運行情況進行了解，對檢驗結果進行有效分析，并應用于臨床，我們建議作好以下3個方面的工作：第一，加強雙方的溝通交流，互相配合。第二，在臨床醫護人員中進行檢驗知識培訓，有效督促其標本采集等檢驗前工作合理進行，使其對影響因素進行關注，如清楚劇烈運動、藥物等對檢驗結果的影響，對病人執行情況進行有效監督，確保前期工作無誤。第三，提高臨床醫護人員標本采集技術，了解標本容器質量，抗凝劑種類以及操作對結果的影響，保證標本合格?？傊?，加強與臨床交流是提高檢驗醫學水平的重要環節，檢驗工作質量取決于標本留取送檢，到報告發出每個細節，嚴格遵守以上環節，構筑一個完整質量管理體系，才能保證實驗的科學性、準確性，為病患的治療提供有效診療依據。
4 醫學檢驗血細胞分析儀操作的規范化、標準化整個檢驗過程
從申請單開出到報告單發出，是一個多人參與的過程，影響因素較多，嚴格遵守檢驗工作流程是確保檢驗質量的重要舉措。我們建議使用條形碼管理，通過條形碼管理標本以減少人為誤差，以適應新形勢下的醫院管理模式。（1）抗凝劑使用，EDTA-K2，1ml血液需要加10～15μl抗凝劑。（2）標本采集操作，坐姿采集標本，并嚴格保證采集時間限制。（3）標本有效存放時間標本采集后，盡可能快的在1h內檢測完畢，時間越短越好。（4）試劑的質量，保證試劑特別是溶血劑的使用很重要，建議使用進口配套試劑。（5）儀器的校準，儀器使用后必須進行校準，建議使用進口配套校準物定期校準。（6）室內質控與室間質評的分析，持每天質量控制的結果進行，出現失控要及時查找原因，采取措施進行糾正，積極參與室間質評活動，對失控的項目要進行分析，查找原因，及時糾正。（7）儀器檢測后，對檢測結果有異常信息警示的，要進行手工鏡檢復查。
參考文獻：
[1]《應重視與臨床交流》，張美和、宋文琪，《中華檢驗雜志》，2004年第27期。
血細胞分析范文5
[關鍵詞] 血細胞分析儀；自動全血模式；預稀釋模式
[中圖分類號] R446.1 [文獻標識碼] B [文章編號] 1673-9701（2014）06-0074-03
眾所周知，隨著當前醫療衛生事業的不斷發展，醫療診療設備不斷進入醫療衛生機構。檢驗設備更是日新月異，尤其是大型全自動檢驗設備的投入，更大大提高了工作效率，節省了患者就診時間，降低了勞動強度，節省了人力資源；同時也降低了人為誤差，提高了準確度。全自動血細胞分析儀作為醫院患者的三大常規檢測項目之一的檢測設備，更是在醫院得到廣泛應用[1]。自動全血模式和預稀釋模式是全自動血細胞分析儀常用的兩種檢測模式，為了了解兩種模式在邁瑞BC-5600全自動血細胞分析儀上的檢測性能，2013年10月我們將血細胞分析儀專用質控物（光學法）用這兩種檢測模式各進行30次檢測，現報道如下。
1 儀器、材料與方法
1.1 儀器及試劑
邁瑞BC-5600全自動血細胞分析儀，中國深圳邁瑞公司產品，該儀器具有自動全血和預稀釋模式，全部使用原裝配套的稀釋液、溶血劑、清洗液、校準品和質控品。
1.2 材料
1.2.1 血細胞分析儀用質控物（光學法）水平中值 3.0mL；型號：BC-SD；P/N：040-00/426-00.LOT.BC309AN.2013-11-05；深圳邁瑞生物醫療電子股份有限公司MINDRAY，BC.5600。
1.2.2 自動全血模式樣本 血細胞分析儀用質控物（光學法）水平中值：從冰箱取出，恢復室溫，混勻后上機自動檢測。
1.2.3 預稀釋模式樣本 40 μL的血細胞分析儀用質控物和120 μL的稀釋液混合均勻，即配成預稀釋模式樣本。
1.3 方法
1.3.1 檢測方法 按儀器操作說明[2]，調整校對好BC-5600全自動血細胞分析儀，在這兩種檢測模式下對兩種模式樣本各進行30次檢測。
1.3.2 統計學方法 采用SPSS19.0統計學軟件對兩種模式實驗數據[白細胞（WBC）、紅細胞（RBC）、血紅蛋白（HGB）、血細胞比容（HCT）、血小板（PLT）的結果]進行處理，結果用均值±標準差（x±s）表示，采用t檢驗，P < 0.05為差異有統計學意義。
2 結果
邁瑞BC-SD血液細胞質控物在BC-5600全自動血細胞分析儀的兩種模式各30次的檢測結果見表1。對比兩種檢測模式的結果不難看出自動全血模式下的各項目精密度優于預稀釋模式。兩種模式白細胞（WBC）、紅細胞（RBC）、血紅蛋白（HGB）、血細胞比容（HCT）差異極為顯著，而血小板（PLT）的結果無差異。
3 討論
血細胞檢測作為醫院就診者的常規檢測項目，對就診人員是否存在出血、炎癥、感染、貧血和血液系統疾病等提供重要診療信息[3-7]。尤其對那些以傳染病、肝膽病患者為主的?？菩葬t療機構，血細胞檢測在細菌/病毒感染、脾功能亢進、消化道出血患者的診療以及抗病毒藥物治療過程中更加重要[8-10]。
血細胞分析儀自從20世紀50年代，庫爾特（Coulter WH）根據血細胞是不良導體的特性，在電解質溶液中懸浮細胞顆粒在通過計數小孔時引起電阻變化，再經儀器放大、甄別、整形、計數，生產出第一臺血細胞計數儀后，開創了血細胞計數的新篇章，實現了血細胞計數的自動化。目前，隨著科技的不斷發展，血細胞計數儀在庫爾特原理基礎上有了新的飛躍。血細胞計數儀也由半自動到全自動，三分類發展到五分類；儀器的設計更加精密、嚴謹，功能更加完善，分析方法也不斷更新換代。全自動血細胞分析儀BC-5600應用半導體激光流式細胞技術獲得白細胞總數和五類白細胞的分類統計計數；血紅蛋白濃度采用比色法；紅細胞和血小板數目以及體積分布用電阻抗法檢測；其余參數由分析儀計算得出。
由表1不難看出，自動全血模式結果的標準差和變異系數較預稀釋模式的小，其結果的精準度也就更可靠[11]。自動全血模式的重復性、精密度之所以較預稀釋模式的好，是由于自動全血模式的檢測全程基本都在封閉的環境中進行，既沒有人工操作的參與，也不受外界環境影響，更沒有交叉污染的干擾；再加現代儀器的做工精良、考究、嚴謹，使得儀器在檢測過程中的吸樣和稀釋兩步固有誤差降低，并可通過質控品和校準品進行校正和修正。而預稀釋模式下，從預稀釋液的準備及末梢血樣本的采集、吸取、混勻到放置后混勻上機檢測，整個過程都在外環境中暴露，是開放性的；此過程中，稀釋液采集的精準、人工末梢血采集時的污染、采血微量管的偏差、吸取末梢血及混勻操作的差異、還有試劑水分蒸發和空氣中顆粒污染等隨機誤差很難消除，因而對檢測結果造成偏差，影響準確性。
從本文可知外周血誤差大、重復性差，因此做血細胞分析時盡量按《全國臨床檢驗操作規程》要求采用抗凝靜脈血，而少用外周末梢血。并按國際血液學標準化委員會的要求用乙二胺四乙酸二鉀（EDTA-K2）抗凝，且含量為每毫升血液用1.5～2.2 mg抗凝劑[4]。要嚴格控制血液與抗凝劑的比例，不能過高或過低，否則影響血細胞計數的準確性。對于極個別因使用EDTA-K2抗凝造成血小板偏低者，可換成枸櫞酸鹽或在EDTA-K2抗凝血中加入肝磷脂[12]。另外，使用抗凝靜脈血不僅防止了交叉污染，延長了儀器壽命，還能滿足原標本的復檢和正確反映患者外周血的實際情況。但BC-5600預稀釋模式的稀釋樣品僅可以計數1次，對超出儀器檢測能力或異常的樣本仍需要再次采集血液，增加患者的痛苦。
為了確保結果準確、可靠，在使用血液細胞分析儀時應注意如下幾點：①工作人員上機前要熟讀儀器和試劑說明書，掌握原理并嚴格按程序操作，并使用原廠配套試劑[4，13]。②用EDTA-K2真空采血管采集靜脈血，并立即顛倒混勻；抗凝血采集后在室溫中不應超過6 h；如需制作血涂片應在2 h內完成。③檢測前必須將樣本充分混勻。④標本上機前應仔細檢查標本量和有無凝塊[6]。⑤對于血細胞分析儀結果異常樣本應推片染色顯微鏡下鏡檢，當然，對于嬰幼兒等特殊患者，可采用末梢血檢測，而檢測結果需校正后方可發出報告。
總之，自動全血模式檢測具有良好的重復性、準確性，優于預稀釋模式，建議推廣，各級醫療單位可根據實際情況合理選擇。
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血細胞分析范文6
【關鍵詞】血小板;血細胞分析儀;影響因素
為了探討自動血細胞分析儀測定血小板的影響因素,筆者采用MEK-5216型血細胞分析儀和手工法對128份成年人血液標本中的血小板含量進行了檢測比較,現報道如下。
1 材料與方法
1.1 待檢對象128份成年人的血液標本,男58例、女70例,年齡21～53歲。
1.2 測定方法采用日本光電MEK-5216型血細胞分析儀(儀器法)和人工顯微鏡下計數法(手工法)平行檢測128份待測標本中的血小板含量并進行對比分析。
1.3 統計學處理使用SPSS 12.0軟件進行t檢驗。
2 結 果
2.1 血小板測定結果比較將128份待測標本按血小板含量分為A、B、C、D四組。兩法的檢測結果(X±SD,×109/L)分別為A組:儀器法128.9±5.28,手工法127.8±5.35;B組:儀器法79.5±4.79,手工法80.3±5.03;C組:儀器法39.8±3.21,手工法30.3±3.37;D組:儀器法18.8±2.83手工法25.7±3.65。經統計學處理,C組和D組兩法的檢測結果有顯著性差異(P
2.2 放置時間對血小板計數的影響對50份靜脈抗凝血和50份預稀釋血分別在采集即刻、放置30分、60分、90分時測定血小板含量,結果(X±SD,×109/L)分別為:靜脈血237±44、234±40、233±39、232±40;預稀釋血236±42、232±40、223±37、210±32。以上結果表明,靜脈抗凝血放置90分鐘對結果影響不大,預稀釋血放置30分鐘結果變化不大,放置90分鐘血小板計數差異較大。
3 討 論
趙勇等[1]認為,用血細胞分析儀進行血小板計數時,結果易受紅細胞體積影響,小紅細胞數量越多、紅細胞體積越小,血小板數值越高;大血小板越多,混入的小紅細胞亦越多,影響越大。避免方法是注意觀察紅細胞直方圖的起點及血小板降波是否達基底,否則,應及時做血涂片觀察或用顯微鏡進行直接計數。另外,由于血小板具有易于粘附、聚集的特點,各種病理因素如腎臟移植、某些血液系統疾病可導致血小板體積偏大或增加血小板的聚集速度,致使這些體積偏大的血小板被誤認為小紅細胞,使血小板計數結果偏低。本文結果表明,兩法對血小板含量很低的血液病及化療患者的測定結果,PLT數量越少,兩者差異越大。王新花等[2]認為,標本放置時間越長,血小板破壞越多;同時,血細胞分析儀計數時,誤將紅細胞碎片作為血小板計入,造成結果假性增高,建議采取標本后應在30分鐘內測定。本文結果表明,預稀釋血放置90分鐘時血小板計數差異較大。血液和抗凝劑比例也會影響檢測結果。血液比例過高時,血漿中出現微血塊的可能性增加,微凝塊可能堵塞儀器影響檢測結果。如果血量少,則抗凝劑的濃度增高,血小板會腫脹、崩解、從而影響結果。
總之,日常工作中應避免血小板的激活和破壞,避免標本被污染,認真做好血小板分析前中后的室內質量控制。在用血液分析儀計數血小板時,如果血小板數目及直方圖、MPV異常,血小板分布寬度(PDW)增加,則應瀏覽血片,估計血小板數量,注意觀察血小板的形態及有無血小板聚集現象。對儀器法血小板結果偏低或異常增高的患者,應及時復查核對并做顯微鏡下手工計數。
【參考文獻】